“Tamizado”

Introduccion.-

Se fundamenta en el fenómeno de la filtración, utilizando tamices de diferentes diámetros en donde quedan atrapados los parásitos como:

·         Trematodos

·         Cestodos

·         Nematodos

Esta técnica permite observar directamente las características morfológicas de los parásitos adultos enteros o fraccionados de los metazoarios.

Material.-

·         Coladera de tamiz fino

·         Abatelenguas

·         Caja petri

·         Pinzas

Sustancias.-

·         Solución salina

Muestra biológica.-

·         Heces fecales

Procedimiento.-

1.    Colocar una pequeña porción de material fecal en la coladera con el abatelenguas.

2.    En una llave de agua se empieza a dispersarla muestra con el abatelenguas previamente agregándole agua para conseguir un tamiz limpio y fino.

3.    Revisar las partículas que quedaron en la coladera

4.    Agregar solución salina en la caja petri seguido de los que se encontró

5.    Identificar lo que se encontró

6.    Se reporta lo que se encontró y si no hay una buena vista mirarlo al microscopio.

Resultados.-

En el tamiz que realizamos nos encontramos con unas partes transparentes que al analizarlos detenidamente concluimos que eran fibras elásticas por su forma y consistencia.

Conclusión.-

En el método CPS que hicimos nos percatamos que solo se utiliza cuando se sospecha de que una persona tiene cierto tipo de parásitos ya que solo se pueden ver a simple vista sin necesidad del microscopio.

Fuentes consultadas.-

http://es.scribd.com/doc/5275620/MANUAL-DE-LABORATORIO-DE-PARASITOLOGIA

“Técnica de Stoll”

Introducción.-

     El diagnóstico parasitológico se fundamenta en el conocimiento de la biología del parásito y la identificación del mismo a través de las técnicas de laboratorio que nos permita su visualización para identificar su estructura observada, como perteneciente a una determinada especie.

Este método forma parte de los exámenes considerados cuantitativos, por lo que es necesario tener el antecedente de que la muestra se encuentra positiva, para su posterior cuantificación. La técnica es de utilidad para hacer una evaluación de la intensidad de ciertas helmintiasis, se debe recordar que los helmintos son metazoarios y dentro de esta clasificación se encuentran los nematelmintos gusanos redondos tales como; Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura, uncinarias (Necator americanus yAncylostoma duodenale) y Strongyloides stercoralis. Además también se pueden cuantificar platelmintos (gusanos planos) como; Hymenolepis nana, Hymenolepis diminuta y otras teniasis.

Materiales.-

·         Tubo de ensaye cónico

·         Aplicador de madera

·         Cuentas de vidrio

·         Portaobjetos

·         Cubreobjetos

·         Microscopio

Sustancias.-

·         Hidróxido de sodio 0.1N

Muestra biológica.-

·         Heces fecales

Procedimiento.-

1.    En un tubo de ensaye cónico se le agrega 5.6ml de hidróxido de sodio 0.1N

2.    Con aplicador de madera se le agrega una porción de heces de tal manera que el liquido se eleve hasta 6ml

3.    Se le agregan 5 cuentas de vidrio

4.    Se tapa el tubo y se agita hasta que las heces se disuelvan bien

5.    Cuando las heces están completamente disueltas se agita por un minuto más y de inmediato se toma 0.075ml de la suspensión y se coloca en un portaobjetos

6.    Se cubre el portaobjetos con un cubreobjetos de vidrio

7.    Se observa al microscopio con el objetivo 40x





Calculo de resultados.-

El número de huevos o larvas contados en toda la preparación se multiplican por los siguientes factores, según se haya tomado 0.075 ó 0.15 ml de la suspensión y también en consideración con la consistencia de la muestra:

Heces	Muestra	Factor
Duras	0.075	200
Pastosas	0.075	400
Liquidas	0.057	800
Duras	0.150	100
Pastosas	0.150	200
Liquidas	0.150	400

Reporte de resultados.-

El resultado se expresa en huevos o larvas por mililitro de heces (ml ó lmlh); por ejemplo:

 Si la materia fecal es pastosa y se encontraron 4 huevos de un cinarias en toda lapreparación:4 X 200= 800Se reportará: 800 hmlh de uncinarias. Toda vez obtenidos los resultados, estos se vacían en una libreta o cuaderno control.

Conclusión.-

En la práctica que se realizo nos dimos cuenta de que este método solo se utiliza con los pacientes que salieron positivo con algún tipo de parasito y este método lo realizan para comprobar si en verdad es positivo y es un buen método ya que es cuantitativo.

Fuentes consultadas.-

http://es.scribd.com/doc/51575922/1/METODO-DE-STOLL

http://usuarios.multimania.es/paraelsa/manual04/practica-8.htm



“Coproparasitoscopio directo”

Introduccion.-

Las enfermedades parasitarias contribuyen de forma importante a los problemas médicos, económicos y sociales existentes en el mundo. El diagnostico de las enfermedades parasitarias se establecen de ordinario por la demostración morfológica de los parásitos o la respuesta inmune a ellos. El diagnostico correcto requiere que:

a) El médico considere que un parásito puede ser la causa de la enfermedad

b) Se obtengan las muestras adecuadas y se transporten de modo correcto al laboratorio.

c) El laboratorio examine de modo competente los especímenes

d) Los resultados del laboratorio sean debidamente comunicados al médico.

e) Estos resultados sean interpretados de forma correcta y aplicados al cuidado del paciente.

Regularmente en el área de Parasitología, las muestras más analizadas para demostrar la presencia de parásitos intestinales del hombre son las heces fecales

Objetivo:

Conocer la importancia del diagnóstico de laboratorio de las enfermedades parasitarias. Identificar las formas parasitarias mediante la observación al microscopio.

Propósito:

Observar mediante frotis y microscopio la presencia de quistes y huevos de helmintos en nuestros frotis.

Materiales:

·         Portaobjetos

·         Cubreobjetos

·         Pipeta Pasteur

·         Vaso de precipitado

·         Microscopio

Sustancias:

·         Sol. Salina

·         Sol. De yodo

Muestra biológica:

·         Heces fecales

Procedimiento:

1.    En un porta objetos se coloco con un agitador una pequeña muestra de heces de tal forma que quedara extendida

2.    Agregar una gota de solución salina y se cubre con un cubre objetos

3.    Se repite el paso número 1 en un porta objetos limpio

4.    Al segundo frotis se le agrega yodo lugol y se cubre con un cubre objetos

5.    Se observan los dos frotis con los objetivos seco dedil (10x) y seco fuerte (40x)

6.    Se observan las diferencias de las dos muestras.

Resultados:

En el primer frotis se observo que se encontraron cristales de ácidos grasos y en el segundo frotis se encontraron fibras musculares.

Conclusión.-

En la práctica que se realizo nos dimos cuenta de que es un método es muy sencillo pero los resultados no siempre se obtienen para lo que se tendrían que hacer otros métodos para ver cual es más eficaz para encontrar parásitos que este método.

Fuentes consultadas.-

http://es.scribd.com/doc/20828731/Manual-de-Parasitologia

“Método de concentración por sedimentación Ritchie”

Introducción.-

Este método es una técnica de análisis coproparasitoscopicos considerados desconcentración fue descrita por Ritchie en 1948

Es un método que consiste en la sedimentación de parásitos intestinales en heces se logra por centrifugación ligera o por gravedad del material fecal, conduciendo a la recuperación de todos los protozoarios, huevos y larvas, especialmente huevos de tremátodos. Concentra bien estas formas y elimina bastantes detritus orgánicos. Aunque se inactivan las formas móviles de los protozoarios, se mantiene la integridad de los organismos. Es efectivo aún en heces con cantidades excesivas de grasas. Sin embrago, durante la sedimentación, aparte de concentrarse los parásitos, se quedan reunidos también algunos otros materiales, abundando los artefactos durante la observación.

 Es un método de concentración fecal muy parecido al de Faust, la única diferencia es que en esta técnica se sedimentará en el fondo la materia fecal a examinar, y es útil para encontrar huevecillos, quistes y trofozoitos muy pesados.

Es empleada cuando no se observan parásitos en el método directo ypara aumentar la probabilidad de observar parásitos en las muestras estudiadas.

Materiales.-

·         Tubos de ensaye cónicos

·         Gasa

·         Embudo de vidrio

·         Vaso de precipitado

·         Aplicadores de madera

·         Pipeta Pasteur

·         Portaobjetos

·         Cubreobjetos

Equipo.-

·         Centrifuga

·         Microscopio

Muestra biológica.-

·         Heces fecales

Sustancias.-

·         Solución salina isotónica

·         Solución de formaldehido al 10%

·         Eter

·         Lugol

Procedimiento.-

1.    Agregar con el aplicador de madera 1gr de heces fecales en un vaso de precipitado.

2.    Se le añaden 10ml de solución salina al vaso de precipitado para poder diluir las heces fecales

3.    Se coloca la gasa en el embudo doblada en 4 partes

4.    Se filtra las heces ya diluidas en el tubo cónico

5.    Se tapa el tubo y se pone en la centrifuga a 2000rpm a 2 minutos

6.    Teniendo ya el tubo centrifugado se decanta el liquido y solo queda el sedimento

7.    Al sedimento se le agrega solución salina y se suspende

8.    Se centrifuga, se decanta y se suspende 2 veces mas

9.    Y a repetidos los pasos se decanta otra vez y se le agrega 5ml de formaldehido al 10% y se mezcla previamente dejando reposar el tubo 10min

10. Ya transcurridos los 10 minutos se le agrega 0.5ml de éter y se tapa para poder agitar el tubo durante 30 segundos

11. Se centrifuga el tubo durante 2 minutos a 2000rpm

12.  Al centrifugar sucedió que en el tubo se observaron 4 capas

 

13. De nueva cuenta se decanta

14. Con la pipeta Pasteur se extrae una gota del sedimento y se coloca en un portaobjetos

15.  A continuación se le agrega una gota de lugol

16. Con un cubre objetos se homogeniza y se cubre el frotis

17. Por último se observa al microscopio con los objetivos seco débil (10x) y seco fuerte (40x)

Resultados.-

Observaciones
Protozoarios encontrados	Imagen
Larva
Quistes
Fibras musculares
Grasas

Comentario.-

Al mirar los frotis en el microscopio nos dimos cuenta que existían algunas anormalidades en cuanto a parásitos.

Conclusión.-

Una vez terminada la práctica nos percatamos de que si se pueden observar algunos parásitos por medio de la realización de este método aunque es un poco tardado por el tiempo que requiere cada paso pero al final se obtuvo lo que se quería.

Fuentes consultadas.-

http://es.scribd.com/doc/43548582/Metodo-de-Ritchie

http://es.scribd.com/doc/51575922/5/METODO-DE-SEDIMENTACION-DE-RITCHIE